禽流感病毒H5N6亞型(AIV-H5N6熒光PCR試劑盒說明書

【產品名稱】

商品名稱：禽流感病毒 H5N6 亞型（AIV- H5N6）核酸檢測試劑盒(實時熒光-PCR法)

Name ：Diagnostic Kit for Avian Influenza Virus subtype H5N6 RNA (Real-Time PCR Method)

【包裝規(guī)格】48T/盒

【預期用途】

本試劑盒適用于檢測標本中的禽流感病毒 H5N6 亞型 RNA，適用于禽流感病毒 H5N6 亞型感染的輔助診斷及流行病學調查，其檢測結果僅供參考。

【檢驗原理】

本試劑盒用禽流感病毒 H5N6 亞型的特異性引物，分別結合一條特異性熒光探針，用一步法熒光 RT-PCR 技術對禽流感病毒 H5N6 亞型 RNA 進行體外擴增檢測， 用于臨床上對可疑感染者的病原學診斷。

【試劑組成】

名 稱 規(guī) 格

酶液 50μL×1 管

AIV-H5N6 反應液 1.0mL×1 管

AIV-H5N6 陽性質控品 50μL ×1 管

陰性質控品 250μL ×1 管

說明：不同批號的試劑盒組分不可交互使用。

【儲存條件及有效期】

-20℃±5℃，避光保存、運輸、反復凍融少于 7 次，有效期 9 個月。

【適用儀器】

ABI 7300、7500、ABI stepone / stepone plus 、安捷倫 MX3000P/3005P、MJ Opticon2、Eppendorf 2/4 Color Systems、Bio-RadCFX96、Roche Gene 6000、Roche LC480 等熒光定量 PCR 檢測儀。

【標本采集】

病死或撲殺禽，取喉氣管、腦、胸肌、心肌和肺等組織；待檢活禽，用棉拭子   取呼吸道分泌物或排泄物，置于 1mL 50%甘油生理鹽水中。

【保存和運輸】

上述標本短期內可保存于-20℃，長期保存可置-70℃，但不能超過 6 個月，標本運送應采用 2~8℃冰袋運輸，嚴禁反復凍融。

【使用方法】

1.樣品處理（樣本處理區(qū)）

1.1樣本前處理

每份組織分別從 3 個不同的位置稱取樣品約 1g，手術剪剪碎混勻后取 0.05g 于研磨器中研磨，加入 1.5mL 生理鹽水后繼續(xù)研磨，待勻漿后轉至 1.5mL 滅菌離心管中，8000rpm 離心 2min，取上清液 100μL 于 1.5mL 滅菌離心管中；棉拭子直接取 100μL 于 1.5mL 滅菌離心管中。

1.2RNA 提取

推薦采用上海晅科生物科技有限公司生產的 RNA 提取試劑盒（離心柱提取法），請按照試劑盒說明書進行操作。

2.試劑配制（試劑準備區(qū)）

根據待檢測樣本總數，設所需要的 PCR 反應管管數為 N(N=樣本數+1 管陰性對照+1 管陽性對照；樣品每滿 7 份，多配制 1 份)，每測試反應體系配制如下表：

試劑 AIV-H5N6 反應液 酶液

用量 20μL 1μL

3.加樣（樣本處理區(qū)）

將步驟 1 提取的 RNA、陽性質控品、陰性質控品各取 4μL，分別加入相應的反應管中，蓋好管蓋，混勻，短暫離心。

4.PCR 擴增（核酸擴增區(qū)）

4.1將待檢測反應管置于熒光定量 PCR 儀反應槽內；

4.2設置好通道、樣品信息，反應體系設置為 25μL；熒光通道選擇： 檢測通道

（Reporter Dye）FAM、ROX， 淬滅通道（Quencher Dye）選擇NONE，

請勿選擇 ROX 參比熒光。

4.3推薦循環(huán)參數設置：

步驟 循環(huán)數 溫度 時間 收集熒光信號

1 1cycle 42℃ 20min 否

2 1 cycle 95℃ 10min 否

3 40 cycle 94℃ 15sec 否

55℃ 30sec 是

5.結果分析判定

5.1結果分析條件設定

設置 Baseline 和 Threshold：一般直接按機器自動分析的結果分析，當曲線出現整體傾斜時，根據分析后圖像調節(jié) Baseline 的 start 值(一般可在 3~15 范圍內調節(jié))、stop 值(一般可在 5~20 范圍內調節(jié))，以及Threshold 的 Value 值(上下拖動閾值線至高于陰性對照)，重新分析結果。

5.2結果判斷

FAM 通道為禽流感病毒 H5 亞型檢測結果，ROX 通道為禽流感病毒 N1 亞型檢測結果

陽性：檢測通道 Ct 值≤35.0，且曲線有明顯的指數增長曲線。

可疑：檢測通道 Ct 值>35.0，且出現典型擴增曲線的樣本建議重復試驗，重復試驗結果出現 Ct 值≤35.0 和典型擴增曲線者為陽性，否則為陰性。

陰性：樣本檢測結果無 Ct 值且無明顯的擴增曲線。

6.檢測方法的局限性

樣本檢測結果與樣本收集、處理、運送以及保存質量有關；

樣本提取過程中沒有控制好交叉污染，會出現假陽性結果；

陽性對照、擴增產物泄漏，會導致假陽性結果；

病原體在流行過程中基因突變、重組，會導致假陰性結果；

不同的提取方法存在提取效率差異，會導致假陰性結果；

試劑運輸，保存不當或試劑配制不準確引起的試劑檢測效能下降，出現假陰性或定量檢測不準確的結果；

本檢測結果僅供參考，如須確診請結合臨床癥狀以及其他檢測手段。

7.質控標準

陰性質控品：無明顯擴增曲線且無 Ct 值顯示；

陽性質控品：擴增曲線有明顯指數生長期，且 Ct 值≤32； 以上條件應同時滿足，否則實驗視為無效。

【注意事項】

所有操作嚴格按照說明書進行；

試劑盒內各種組分使用前應自然融化，*混勻并短暫離心；

反應液應避光保存；

反應中盡量避免氣泡存在，管蓋需蓋緊；

使用一次性吸頭、一次性手套和各區(qū)工作服；

樣本處理、試劑配制、加樣需在不同區(qū)進行，以免交叉污染；

實驗完畢后用 10%次氯酸或 75%酒精或紫外燈處理工作臺和移液器；

試劑盒里所有物品應視為污染物對待，并按照《微生物生物醫(yī)學實驗室生物安全   通則》進行處理。

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